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醛缩酶基因的克隆及其在大肠杆菌中的表达

作者:陕西保健网
来源:http://www.xapfxb.com/yuer
更新日期:2021-01-21 05:46

造梦西游3雪球技能-

2021年1月21日发(作者:劳培)






























第九届

昂立杯

学生课外学术科技作品竞赛






醛缩酶基因的克隆

及其在大肠杆菌中的表达





















者:



























所在班级:


生物工程
0803













小组成员:


林浩、马斌祥














指导教师:















2010

11




摘要:
本研究根据已知的编码醛缩酶的基因序列,设计一对特异性引物,以实验室保藏菌株
ZJUTB-DER A

基因组
DNA
为模板,利用
PCR
技术扩增得到约750bp
的片断,将该片断与克隆载体
pMD18-T
连接并测序,
根 据测序结果,
重新设计一对引物,
并在两端加上
NcoI

SalI
的识别位点序列,
通过
PCR
获得长度为
684bp
的醛缩 酶编码基因,将所得片断定向克隆至
pET28b
载体中,转化至
BL21
感 受态细胞中,筛选出了阳性克
隆子。利用
IPTG
对阳性菌进行诱导,并对表达产物进 行了分离纯化,
SDS- PAGE
电泳检测出在约
24kD

有 一蛋白表达带,对重组基因工程菌的酶进行测定,结果为
133.8U


关 键词:
2-
脱氧核糖
-5-
醛缩酶、基因克隆、表达、酶的纯化


引言

他汀类药物
(Statins)

20< br>世纪
80
年代后期开发的一种降血脂药物,作为
3-
羟基
-3 -
甲基
戊二酰辅酶
A(HMG- CoA)
还原酶抑制剂,通过与该酶竞争性结合,使
HMG- CoA
无法转变
成甲羟戊酸

(Mevalonate)
,甲羟戊酸 是合成内源性胆固醇的原料,从而阻断胆固醇的合成,
降低血胆固醇的水平。
此外,
他 汀类药物还具有降低甘油三酯、
提升高密度脂蛋白水平等重
要作用,
因此,
他 汀类药物在预防和治疗冠心病、
动脉粥样硬化等方面有着广泛的应用。

外有研究显示 ,他汀类药物还可以影响肿瘤细胞的生存与发展,具有一定的抗肿瘤作用。

据统计数据表明, 在调
/
降血脂药物市场中,他汀类原料药所占的市场份额约为
180

亿美元,占全球调
/
降血脂类药物
60%
的市场份额。因此,随着部份药物 专利到期,各制药
企业和相关研究机构积极投身于他汀类药物的生产和研发。
目前全球已开发的 他汀类药物有
十多个品种,如洛伐他汀、阿托伐他汀、辛伐他汀、美伐他汀等,从各类他汀的化学结构中
发现它们普遍都具有一个手性的侧链基团,
其结构是二羟基酸或是
(杂)
环芳 香内酯。
由于
在化学合成该手性侧链的过程存在着成本高、
污染严重,
反应步 骤长,
合成收率低,
副反应
多,
产品分离纯化难度大等缺点。
同时,
随着生物催化与生物转化研究的飞速发展,
结合生
物酶法与化学法合成他汀侧链逐渐成 为研究热点。
醛醇缩合反应是碳碳键生成的有效反应之
一,
2-
脱氧核糖-5-
磷酸醛缩酶
(DERA,
EC
4.1.2.4)
则是 不对称直接醛醇缩合反应的高效催化
剂,它可以在水溶液中、中性
pH
条件下催化不对 称碳碳键的形成,因此受到研究者的广泛
关注。

DERA
是一种无需磷酰化 体的独特的生物催化剂,它可以催化
D-
甘油醛
-3-
磷酸与乙醛
反 应生成
2-
脱氧
-D-
核糖
-5-
磷酸酯。
该醛缩 酶正在成为强大的用于工业合成手性分子的工具,
它可以利用乙醛或和
2-
取代乙醛为 底物,通过
4-
取代
-3-
羟基正丁醛中间产物来生产
2,4,6-
三脱氧己糖或其衍生物。此类
2,4,6-
三脱氧己糖及其衍生物是他汀侧链的合成前 体。与其它
酶类相比,
DERA
合成他汀侧链具有原料结构简单易于检测分析,
且来源丰富、
价格低廉等
优点。
目前研究最多的是利用乙醛和氯乙醛反应生产
6-

-2,4,6-
三脱氧吡喃糖苷。
利用
DERA
催 化的羟醛缩合反应来生产他汀侧链具有一定的不足之处,
主要表现为生产能力低,
原因是
该酶对醛类物质(包括乙醛、氯乙醛等)的耐受性较差,在高浓度底物存在下,醛缩酶极易
失活。在研 究初期,该反应是在低底物浓度,低温(
2-4
℃),高酶浓度下,经过
7
天 的反
应时间,才达到
100g·
L-1
的产物浓度。

本文作者根据
NCBI
公布的醛缩酶编码基因序列,设计了一对引物,利用实验室保藏
菌株
ZJUTB-DE RA
的基因组
DN
为模板,扩增得到了编码醛缩酶编码的基因序列,并构建
了 含有编码醛缩酶结构基因的原核表达载体
pET28b-DERA
,成功地使其在
E.
coli

BL21

进行了活性表达,本文报道有关研究结果。

1
材料与方法

1.1
工具酶和试剂

基因组提取试剂盒购 自
MP
公司,质粒提取盒、
PCR
产物纯化试剂盒、胶回收试剂盒
均 购自
Axygen
公司,各种工具酶均购自
Takara
(宝生物)公司,配 制微生物培养基所用酵
母粉、蛋白胨为
OXOID
公司产品。

1.2
质粒,菌株与培养条件

所用克隆载体为
pMD18-T< br>,
表达载体为
pET28b

宿主大肠杆菌为
JM109(r ecA1 sμpE44
endA1
hsdR17
gyrA96
relA1thi

(Lac
—proAB)
F’[traD36
proAB+
lacIq
lacZ

M15])

BL21(DE3)(
F-

ompT

hsdS(rBB-mB

)< br>,
gal

dcm(DE3))
,均为本实验室保存。
LB
培养


g/L


胰蛋白胨

10

酵母提取物

5

氯化钠

5

pH 7.0

需要时使用前加入
100
μ
g/mL
氨苄青霉素
(Amp)
或卡那霉素
(Kan)
,固体培养基添加
2 %
琼脂,用于大肠杆菌培养。

1.3
酶缩酶基因的克隆

1.3.1 ZJUTB- DERA
基因组
DNA
的提取

从甘油管中吸取
100
μ
L
的保藏菌种,
加入到
LB
培养基中,
37
℃,
250 rpm
摇床培养

24 h
,收集菌液,采用快速核酸提取仪及微生物基因组提取试剂盒提取
ZJUTB- DERA

基因组
DNA


1.3.2 PCR
反应条件

PCR
反应体系各组分加入量
(总体积
50 μL


10×Taq Buffer 5 μL

10mM dNTP mixture
1 μL
,克隆引物
1

2

1 μL
,基因组
DNA 1 μL

Taq DNA
聚合酶
1 μL
,无核酸水
40 μL

采用
Biorad

PCR
仪,
PCR
反应参数为:
94


30s

55


30s

72


60s

重复
30

循环后,取
5 μL

0.9 %
琼脂糖凝胶电泳检测。

1.3.3
目的片段的回收

PCR
产物约
50
μ
L


1 %
的琼脂糖电泳回收目的片段。
利用
DNA
胶回收试剂盒进行
回收,方法参见
DNA
胶回收试剂盒说明书。

1.3.4
克隆载体的构建与鉴定

将回收的目的片段同载体
pMD18- T
进行连接,
具体方法按
pMD18- T
载体试剂盒说明
书进行,
构建重组质粒
pMD18- T-DERA

然后将重组质粒热击转化到
E. coli
JM109 < br>宿主菌













24μg/mL


-
β
-D-






( isopropyl-
β
-Dthiogalactopyranoside, IPTG)

50μg
/mL
氨苄青霉素
(Amp )

40μg
/mL 5-

-4-

-3-吲哚
-
β
-D-
半乳糖苷
( Bromo-4-Chloro-3- Indolyl-
β
-D- Galactoside

X-gal )

LB
琼脂平
板上,
37

培养过夜。
利用蓝白斑筛选,
从平板上挑取白色菌落,
提取质粒后用自动序列仪
进行测序
(
由大连宝生物 公司完成
)
,并用
DNAMAN
软件分析测序结果。

1.4
酶缩酶基因的表达

1.4.1
表达载体的构建与鉴定


1.3.4
测序结果的基础上,设计引物
3
及引物
4
。利用引物
3
引物
4
,以
pMD18-
T-DERA
为模板扩增醛缩酶结构基因,
PCR
反应参数为:
94


30s

54


30s

72


60s

重复
30
个循环后
72
℃继续延伸
10min
。用
0.9 %
的琼脂糖凝胶电泳鉴定
PCR
产物。

1.4.2
目的片段的回收:方法同
1.3.3


1.4.3
表达载体的构建

纯化后的醛缩酶结构基因用
NcoI

Sal

37

酶解
6h


DNA
回收试剂盒回收
684bp

DNA
片段。将
pET2 8b
质粒用
NcoI

Sal

37

酶解
6h
,用
DNA
回收试剂盒回收。将
回收 的目的片段和载体质粒连接,构建表达载体
pET28b-DERA


1.4.4
阳性克隆的筛选


1.4.3
中构建好的表达载体
10μ
加至
100μL

BL21(DE3)
感受态细胞中,
轻轻混匀,
在冰上静置
30min

42
℃水浴静止热击
90s
,迅速转移至冰上静置< br>2min
,加入
800μL
LB

养基,转移至
3 7
℃摇床,
250rpm
温育
60min
,使细菌复苏并表达质粒编 码的抗生素抗性标
志基因。
取适当体积已转化的感受态细胞涂布于含有
Kan
抗生素的
LB
平板上,
将平板置于

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