-
学
院
:
化学与生命科学
专
业
:
生物技术
姓
名:
管宇
学
号
: 09640129
生化大实验
血清白蛋白的分离、纯化与鉴定
一
.
实验目的
掌握血清白蛋白分离纯化的方法;
学会用盐析和离子交换柱层析法分离纯化蛋白质的原理与操作;
学会用考马斯亮蓝法测定蛋白质含量;
学习检测蛋白质纯度的方法;
掌握
SDS-
聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质分子量的原理和方法。
二
.
实验原理
1.
血清白蛋白的初步分离
血清白蛋白约占血浆蛋白总量的
60%
,水溶性很强,结构稳定,能结合多种小分子,如脂肪酸,胆红素,血红素等,起维持血液的正常渗透压作用。此外白蛋白还有解毒、参
与脂类代谢 及血浆中微溶物质的运输、维持血液酸碱平衡等作用,在医学临床及生物领域
应用广泛。
可以根据不同蛋白质的相对分子质量、溶解度以及在一定条件下带电的情况的不同来
分离及提纯各种蛋白质。
盐析是广泛使用的分离蛋白质的方法,所谓的盐析就是用大量中性盐 使蛋白质从溶液
中析出的过程。在高浓度的中性盐影响下,蛋白质分子的水化膜被剥夺及所带的电荷被中
和,因而破坏了蛋白质溶胶的稳定因素,使蛋白质沉淀析出。但中性盐并不会使蛋白质变
性,因 此,若除去中性盐或减低盐的浓度,蛋白质就可以重新溶解。
在半饱和硫酸铵溶液中,血清白 蛋白不沉淀,球蛋白沉淀,离心后白蛋白主要在上清
液中。由于血清白蛋白的相对分子质量较硫酸铵大得 多,故盐析初步分离的白蛋白可用透
析法或凝胶层析法除去硫酸铵。
奈氏试剂是络盐
K2[HgI4]
加
KOH
的溶液,在无机化学定性分析中,用其检验氨或铵
盐
2.
血清白蛋白的纯化
离子交换层析是一种用离子交换树脂作支持剂的层析方法。
本实验采用的是
DEAE
-纤维素阴离子交换剂
(中强碱型)
,
可电离基团是二乙基氨基乙基,适用于大分子的分离。在离子交换层析中,蛋白质对离子交换剂的结合力取决于彼
此之间相反 电荷基团的静电吸引,而这又和溶液的
pH
与盐离子浓度有关。因此,蛋白质
混合物的 分离可以由改变溶液中盐离子浓度和
pH
来完成,对离子交换剂结合力最小的蛋
白质首 先从层析柱中洗脱出来。除硫酸铵后的白蛋白溶液在
0.02mol/L
pH7.4
醋酸铵缓冲
液的条件下,加到二乙氨乙基(
DEAE
)一纤维素层析柱上,在此
pH
时,
DEAE
一纤维
素 带有正电荷,它能吸附带负电荷的白蛋白、
α
及
β
球蛋白(血清白蛋白等电点 为
4 . 5
,
绝大多数,
α
及
β
球蛋白等电点均小于
6 )
。随着盐离子浓度的提高,离子交换柱上的
β
-球蛋白、
α
- 球蛋白、白蛋白依次被洗脱下来。
3.
血清白蛋白纯度及相对分子量的测定
SDS
-
PAGE
是最常用的定性分析蛋白质的电泳方法,特别是用于蛋白质 纯度检测和
测定蛋白质分子量。
电泳迁移率与颗粒的电荷、形状、大小(分子量)有 关,如电荷、形
状都一样,则电泳迁移率只与分子量有关。
SDS
的作用< br>:
1.
能断裂分子内和分子间氢键,破坏蛋白质的二级和三级结构,强还原
剂( 巯基乙醇)能使二硫键断裂,使蛋白质完全变性;
2.
能与变性的蛋白质按比例结合,
形成
SDS-
蛋白质复合物。
SDS-
蛋白质复合物的特点:
1.
由于结合大量的
SDS
,
使蛋白质丧失了原有的电荷状态,
从而降低或消除了各种蛋白质分子之间天然的电荷差异;
2.
复合物都是椭圆棒状,从而降
低或消除了各种蛋白质分子之间天然的形状差异。< br>
因此在进行电泳时,蛋白质分子的迁移速度取决于分子量大小。
在一定范围 内,
蛋白质的迁移率和分子量的对数呈线性关系,
符合下式:
logMW=K-Bx< br>(
MW
为分子量,
X
为迁移率,
k
、
b均为常数)
若将已知分子量的标准蛋白质的迁移率对分子量对数作图,可获得一条标准曲 线,未
知蛋白质在相同条件下进行电泳,根据它的电泳迁移率即可在标准曲线上求得分子量。
该法测定蛋白质分子量的局限性:
1.
蛋白质是由亚基(如血红蛋白)或两 条以上肽链(如胰凝乳蛋白酶)组成的,
测定时只是它们的亚基或单条肽链的
MW
。< br>
2.
电荷异常的蛋白质(如组蛋白,带大量正电荷)
。
3.
结构异常,不于分子量呈线性关系(如胶原蛋白)
。
4.
带有较大辅基的蛋白质(如糖蛋白)
。
4.
血清白蛋白含量的测定
考马斯亮蓝
G250
的磷酸溶 液呈棕红色,最大吸收峰在
465nm
。当它与蛋白质结合形
成复合物时呈蓝色,其最 大吸收峰改变为
595nm
,考马斯亮蓝
G250 -
蛋白质复合物的高消< br>光效应导致了蛋白质定量测定的高敏感度。在一定范围内,考马斯亮蓝
G250-
蛋白质 复合
物呈色后,
在
595nm
下,
吸光度与蛋白质含量呈线性关系,
故可以用于蛋白质浓度的测定。
三
.
实验步骤
1
.
血清白蛋白的初步分离
(
1
)收集血清:取
5 ml
血液,
4
℃,
3,000 rpm
离心
15 min
,用移液枪吸取上清(血清)
1 ml
至
10 ml
离心管,留
0.1 ml
(样
1
)至
1.5 mL
离心管,用于测定蛋白质含量和电泳;
(
2
)量筒量取
9
ml
底液,用移液管逐滴加入,在加的过程中需不断的摇晃或振荡,
4
℃
静置
2 h
;
(底液为
50 %
的饱和硫酸铵溶液)
;
(
3
)
4
℃,
3,000 rpm
离心
15 min
,收集上清,留
0.5 ml
至
1.5 ml
(样
2
)离心管,用于
测定蛋白质含量和电泳;
(
4
)用
5%
的柠檬酸缓冲液调节
pH
至
4.5
(
7-9
滴,白蛋白的等电点)
,用量筒确定上清液
的体积,计算加入饱和硫酸 铵(
pH
=
4.5
)的体积(
0.11
×
V
)
;
(
5
)逐滴加入饱和硫酸铵(
pH
=4.5
)
,边加边振荡,
4
℃静置
2 h
;
(
6
)
4
℃,
3,000 rpm
离心
20 min
,弃上清,沉淀用
0.5 ml pH 7.4
的柠檬酸
-Na2HPO4
缓
冲液溶解,留
0.1 ml
至
1.5 ml
离心管(样
3
)
,用于测定蛋白质含量和电泳;
(
7
)将剩余的
0.4 ml
蛋白质溶液将透析袋中,放入
pH 7.4
的柠檬酸
-Na2HPO4< br>缓冲液中,
搅拌透析过夜至蛋白质溶液中无
NH4
+存在;
(透析袋的 制备:透析袋中部有不能碰,将
两条用棉线扎紧)
;
(
8
)
NH4
+的检测(奈氏试剂检测)
:取
1 ml
透析液,加入
5
滴奈氏试剂,混匀,观察,
如果出现砖红色沉淀,说明仍 有
NH4
+存在,需继续透析;
2
.
血清白蛋白的纯化
(
1
)装柱:将层析柱固 定,保持垂直位。将浸胀的
DEAE-
纤维素装入柱内,至
8-10cm
高< br>度,
平衡过夜
(装柱时应注意均匀,凝胶内不得有气泡,凝胶床要平整)
;
(
2
)
准备
60
-
100
支试管, 置于自动收集器上;洗脱液经核酸蛋白检测仪监视,调节流速
为
1mL/min
,蛋白质检测器调零;
(
3
)
上 样:
将透析袋剪开,
用移液管转至凝胶面上,
待样品进入凝胶后再加入少量缓冲液,< br>使样品完全进入胶内;
(
4
)洗脱:采用连续梯度洗脱。接上恒流泵 ,用
0.02
~
1.0mol
/
L
醋酸-醋酸铵缓冲液(
pH7.4
)进行梯度洗脱,收集;记录出现峰值的管号;保存样品。
3
.
血清白蛋白纯度及相对分子量的测定
(
1
)胶的制备(
SDS-PAGE)
编号
1
2
3
4
5
6
7
总体积
溶液名称
30% Acr
–
0.8% Bis
pH 8.9 Tris -HCI
pH 6.7 Tris- HCI
10%SDS
TEMED
10%AP
H2O
胶的制备(
PAGE)
编号
1
2
3
5
6
7
总体积
溶液名称
30% Acr
–
0.8% Bis
pH 8.9 Tris -HCI
pH 6.7 Tris- HCI
TEMED
10%AP
H2O
12%
分离胶
2.0ml
1.25ml
-
2.5ul
50ul
1.75ml
约
5 mL
4%
浓缩胶
0.33ml
-
0.63ml
2.5ul
12.5ul
1.53ml
约
2.5 mL
12%
分离胶
2.0ml
1.25ml
-
100ul
2.5ul
50ul
1.65ml
约
5 mL
4%
浓缩胶
0.33ml
-
0.63ml
25ul
2.5ul
12.5ul
1.5ml
约
2.5 mL
(
2
)
样品的处理:
向标准蛋白质或待测样品中按比例加入上样缓冲液,充分溶解后,
加盖
(不要密闭)< br>,置沸水浴
3 min
,取出冷至室温。
上样顺序:
(
1
)标准蛋白;
(
2
)收集的蛋白质溶液;
(
3
)柱层析出现高峰的管号蛋白质溶液;
加样量:
20
μ
l.
(
3
)
电泳:点样端负极,恒压:开始
80V
,待样品进入分离胶后改为
100V
进 行电泳。
(电极缓冲液:
pH 8.3 Tris
–
Gly
)
(
4
)染色:脱色考马斯亮兰
R-250
,
4h
或过夜。
(
5
)脱色:先用 蒸馏水冲洗凝胶,再用脱色液(冰醋酸:蒸馏水:甲醇
=75
:
875
:50
)脱
色
2-6h
。
计算血白蛋白的相对分子量
:
logMW=k-bx
(
MW
为分子量,
x
为相对迁移率,
k
、
b
均为常数 )
4
.
血清白蛋白含量的测定
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