上海耳鼻喉科临床常见标本的采集方法

2021年2月6日发(作者：嗓子发痒想咳嗽是怎么回事)
临床常见标本的采集方法

一、静脉血标本的采集

1
．操 作者先洗手或用手消毒剂喷雾后揉搓待干；
2
．根据受检者检验项目选择真空采血
< br>管；
3
．在穿刺点上方约
6cm
处系紧压脉带，嘱受检者紧握拳头，使 静脉充盈显露，进行皮
肤消毒；
4
．取下双向采血针头无菌帽，以左手拇指固定静脉穿 刺部位下端，右手拇指和食指
持采血针柄，使针头与皮肤呈
30
°角沿静脉走向快速刺 入皮肤，然后呈
5
°角向前刺破静脉
壁，进入静脉腔。见回血后，将针头顺势深入少许 即可；
5
．将采血针的另一端刺入所需的真
空采血管盖中央的胶塞中，血液自动流入试 管。如需多管血样，将松开压脉带，嘱受检者松
拳，用消毒干棉球压住穿此处，快速拔出针头，嘱受检者 按压局部数分钟；
6
．取下采血针放
入利器盒，将所采血样分别贴上相应的条码，抗凝 血需立即颠倒混匀，及时送检。

二、动脉血气标本的采集

1
．受 检者取坐位或卧位，休息
5min
，应正常呼吸，避免憋气及过度通气，以免影响检

查结果；
2
．选择动脉血管后，常规皮肤消毒，用动脉采血针（内有肝素）垂直刺入血 管，针
管自动吸入
0.5ml
后，用消毒干棉球压住穿刺处快速拔出针头。局部按压< br>5min
以上，防止血
肿形成；
3
．拔出后立即将针头用橡皮封闭，隔 绝空气。随即挫动注射器，使血液与肝素充分
混匀，立即送检。送检过程中要防止针头橡皮脱落，造成空 气直接进入注射器。如有不慎脱
落，必须如实向检验人员说明情况，并告知临床医生，以免影响检验结果 和临床诊断。如确
因不能及时送检，可将标本短时间内保存于
4
℃冰箱中。

三、生化检验标本的采集





注意病人生理 因素对检验结果的影响，如年龄、性别、体型、情绪、运动、体位改变等。
研究表明，
CH、
ALP
、
UA
等项目易受年龄的影响，性激素的测定男女差别巨大。受 情绪影
响较大的项目有
GLU
、
GH
、
CA
、Cor
、
PRL
等。
另外，
血清中
CH
、ALB
、
ALT
、
ALP
、
AST
、
TG
、
AMY
及血清
Ca
等项目受体位改变因素影响较大。还应注意 饮食对测定结果的影响，
包
括病人是否真正空腹及不进流食。空腹一般控制在
12—
16h
最佳，过长或过短对某些测定结
果可产生影响，如
GLU
、
BUN
、
CR
、
ALB
、
UA
、TG
、电解质、肝功能等。个别项目需病人
控制饮食，如血脂测定前最好连续素食
3
天，以防产生假性结果。注意药物对测定结果的影
响，目前以证明至少有
100多种药物对多项生化检验结果有影响，如利胆剂可使血清
CH
升
高；肝素使血清< br>CH
降低，
APTT
显著升高，大剂量的维生素
C
对氧化酶法 测定血清
GLU
有
负干扰，
CH
、
TG
的
Trinder
反应产生负干扰，咖啡因造成血
GLU
、
CH
增高， 冠心平导致血
清中
TG
和
LDH
增高，大剂量青霉素可使血清
CK
、
ALT
、
CR
升高而
BIL
降低等。尽可 能在
标本采集前
2d
停服药物，
却因治疗需要无法停药者，
应在检验 申请单上注明用药种类和剂量，
以备参考。




此外，对采样时间要求严格的检验项目，应详细告诉病人真确记录时间，何时采取标本
等事宜，如< br>24h
尿蛋白和电解质测定，糖耐量试验等。对于如激素易受生理因素影响的项目，
需多 次测定时，最好选择每天的同一时间采样，以便减少昼夜变化的影响，便于比较和分析。

四、葡萄糖耐量试验标本的采集



OGTT
检查前三天 停用胰岛素、肾上腺皮质激素等药物，可正常饮食（每天碳水化合物
量一般控制在
250
—
300g
）
。试验前一天晚上餐后不再进食（空腹
8
—
124h
）
。标本采集后应立
即送检，切忌不同时间点的多份标本采集后一起送检。< br>
五、血液流变学标本的采集





采 集前三天停用具有溶栓抗凝作用和降脂的药物，女性避开月经期。采集前空腹
12h
以
上，前一天晚上低脂饮食，患者处于静息状态。避免在输液过程中采血，禁止在输液手臂同
侧采集血液， 抽血时病人取坐位肘部静脉采血。采血后立即送检并检测，最好在
4h
内完成，
存放于
4
℃冰箱可延长至
12h.
血样不宜在
0
℃以下存放，以免
RBC
发生破裂。

六、疟原虫标本的采集





间日疟及三日疟患者应在发作后数小时至十余小时采血为宜，恶性疟患者应在发作 开始
时采血。怀疑疟疾的患者一次检查阴性应多次复查，必要时骨髓涂片检查疟原虫。采集的静
脉血标本应尽快送检，标本应及时制成学膜片。血膜片可于室温中保存，尽早检查。

七、微丝幼标本的采集





以晚上
22
时至次日凌晨
2
时病人从睡眠中醒来后，
立即采血为宜。
如夜间 采血确有困难
的病人可采用诱出法，即在白天口服海群生
2~6mg/kg
体重，15~30min
后采集血液。采用试
管浓集法：取含有
0.4ml
枸橼 酸钠的真空试管（黑色盖子）
，采集静脉血
2ml
注入试管，轻轻
颠倒混匀< br>6~8
次，防止标本凝固。标本采集后应尽快送检，并及时制成血膜片尽快检查。检
验后 的剩余血液可以放在冰箱保存
3d
八、乳酸测定标本的采集





检测前三天，待检者不要做剧烈运动，抽取标本前禁食
12h.
。在患者处于安静状态后
2h
采集标本，并嘱患者不可用力握拳。

九、血药浓度监测标本的采集





对于治疗 药物的检测，应根据药代动力学选择服药后的最适时间抽血检测。欲了解药物
的长期效应，通常在药物的 第
5
个半衰期（药物的稳定期）采血；欲了解药物的峰值效应，
通常在用药
1 ~2h
采集（地高辛和毛地黄毒苷为
6~8h
）
。

十、激素检测标本的采集





许多激素在一 天
24h
内的分泌量不同的。如可的松在血液中的峰值为早晨
4~6
时，GH
、
LH
和
FSH
均以阵发性方式释放。在测定此类激素时， 有必要采集连续时间间隔的数份血标
本，以其中间值为测定值；而血清中肾素活性在体位由卧位变为站位 时，将出现明显增高。
ACTH
分泌峰值期在
6~10
时，低值期在
0~4
时，波动幅度为
150%~200%
。妇科激素采血前
建议静坐
30min
，标本采集前需要停止类固醇药、甲状腺素、
ACTH
、雌激素或性腺激 素的治
疗，否则会影响检测结果。抽血检查时患者和医生应准确把握月经周期，以便解释检验结果。
十一、尿液分析表本的采集



患者留取标本前
2 4h
禁止服用维生素
C
等药物，勿食深色素食物。禁服磺胺类药物，禁
止加甲 醛等防腐剂。嘱患者清洁尿道口及周围皮肤，防止粪便、清洁剂、粉剂、油类及有色
物质等污染尿液。最 好留取晨尿或“二次晨尿”
（清晨排空膀胱，空腹收集
2h
的尿液）
，也可< br>随时留取中段尿，尿量不少于
10ml
。尿标本
2h
内送检，避免强光 照射。

十二、尿三杯试验标本的采集





取尿杯
3
个，标明
1
、
2
、
3
。 于清晨第一次排尿时，分为三段排于
3
个尿杯中，每杯不
少于
5ml
。第一杯留取最前段部分尿液，第二杯留取中段尿液，第三杯尽量留取最后段部分
尿液。注意尿液要一次 性排出，中间不可间断，留尿后立即送检。

十三、尿红细胞位相标本的采集





留取标本前病人按常规尿检准备。留取早晨第一次尿的中段 尿（晨尿）
10ml
于洁净容器
中（必要时清洗外阴）
，
2~8℃冷藏保存。早上
8
时到检验科时，留取新鲜的中段尿
10ml
于洁净容器里
（必要时清洗外阴）
，
两次留取的尿液一并及时送检。
注意留尿 前不要喝大量的水
（
B
超以后的尿不能用）且保证尿样不受污染（女性以避开行经期）
。

十四、
24h
尿蛋白定量标本的采集





留取标本前病人按常规尿检准备。准备一洁净、无污染的干燥盛尿大容 器，从检验科领
取
5ml
甲苯作为防腐剂。具体步骤：
1.
在收集标 本的第一天（如早晨
7
时）
，病人排空膀胱中
的的尿液，弃去不要。此后，连 续收集
24h
的全部尿液排入大容器中。留取第一次尿液时把
5ml
甲苯一并 倒入；
2.
在结束收集标本的第二天（如早晨
7
时）
，病人排空膀胱 中的尿液，收
集于盛尿容器里；
3.
准确测量并记录总尿量；
4.
充 分混匀全部尿液，
取出约
5ml
于常规尿管中，
贴上标识，送检验科检测，其 余尿液弃去不要。注意
24h
留尿完毕后，须将全部标本充分混
匀，准确记录尿量，再 取出约
10ml
检测标本。

十五、大便常规标本的采集





必须使用洁净、干燥、无吸水性的的容器，禁止用棉拭子、纸巾、纸盒 等留取或存放。
尽量选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便，外观无异常的粪便必须从表面、深处和粪端 多
处获取标本。检查绕虫卵时，需用软黏透明纸拭子，在清晨排便前自肛门周围拭取标本，也
可 用棉拭子拭取，但必去立即送检。检查痢疾阿米巴滋养体，应于排便后迅速送检，立即检
查。冬季采取保 温措施。

十六、精液常规标本的采集



检查前禁欲（ 性生活、手淫及遗精）
3~7d
，已明确精子形成低下时，应禁欲
7d
后再收 集
标本。排精次数与禁欲时间可能对检查结果产生一定的影响，有报道禁欲时间过长，精液量
虽 然增多，但精子活力有所下降。留取标本前排净尿液，必要时清洗外阴部。用手淫或其他
的方法，将一次 射出的全部精液收入洁净、干燥的加盖容器内，有报道分布射精收集的各段
精液分析中，最前段精液中精 子的密度最高，以后各段渐依次减少，故精液采集时应收集全
部标本。勿使用可能被酸碱污染或对精子产 生影响的容器，乳胶或避孕套内含有抑制精子活
力的滑石粉，应禁止使用。标本送检时需正确注明采样时 间，
30min
内保温送检。精液常规
检查如果出现一次异常结果，应隔
1< br>周后再复查，连续检查
2
次至数次，间隔应大于
7d
不能
仅凭 一次检查结果作出判断。

十七、常见临床微生物标本的采集





微生物检验工作的成败除了实验室的能力和效率外，很大程度上要看标本采集和送 检环
节的质量。由于标本的采集和处理不当，可能造成检验结果的假阳性和假阴性。因此微生物
标本的采集应遵循如下原则：
1.
尽量在抗菌药物使用前采集标本。采集标本前应至少停药3d.
如病人不能停药，应在下次抗生素使用前采集。
2.
标本采集时，应严格执 行无菌操作，减少
或避免机体正常菌群及其他杂菌的污染。
3.
标本采集后应立即送至 微生物实验室，放置时间
过长会影响检验结果。如不能立即送检，一般应放
2~8
℃冷 藏的条件下保存（血液培养采集
后若不能及时送检，可于室温保存）
。某些菌种（淋病奈瑟均、 脑膜炎奈瑟菌、嗜血杆菌、肺
炎链球菌等）
。不仅要及时送检，而且再送检的过程中要注意保温 。
4.
盛标本的容器必须经灭
菌处理（到微生物实验室领取）
，但不得使用消 毒剂和酸类剂处理，以免残留物影响细菌的生
长。送检时，标本切勿污染容器的瓶口和外壁，防止污染和 传播。
5.
送检标本应注明标本来
源和检验目的，以正确选用相应的培养基和适宜的培 养环境。

1.

血液及骨髓标本的采集：

采血的部位多 为肘中静脉，疑为亚急性细菌性心内膜炎时，以肘动脉和股动脉采血：为
宜。切忌在静脉点滴抗菌药物的 静脉处采血。采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血
液注入血培养瓶前，应更换针头或过火消毒。 血培养瓶不用时放常温即可，不必放在冷藏室。

采血次数及间隔时间：急性发热性疾病（如脑 膜炎、细菌性肺炎等）需尽快进行抗菌治
疗。急性骨髓炎、化脓性关节炎等需要紧急手术的患者，立即从 两臂分别采取
2
份标本。对
感染性心内膜炎的患者再
24h
内采血< br>3
次，
每次间隔不少于
30min
，
必要时次日再作血培养< br>2
次。对发热原因不明者两次抽血间隔为
60min
，必要时于
24~ 48h
后再抽血
2
次。国外资料统
计，
1
次血培养菌血症的 检出率为
80%
，
2
次可达
90%
，
3
次 可达
99%.
每次采血量成人
5~10ml
，
婴幽儿为
1~ 2ml
。培养基：血液为
10
：
1
，以稀释血液中的抗生素、抗体、 补体、溶菌酶等杀
菌物质。有人主张对于长期接受抗菌药物治疗的病人，培养基：血液应大于
2 0
：
1.
骨髓一般
采集
1~2ml
血标本的采集和培养各 环节必须严格无菌操作，以免发生标本的污染。同时，不可将血
培养中出现的不常见细菌或一些皮肤表面 的正常细菌随意的判断为污染菌。因为对一些大量
使用抗生素、
免疫制剂以及机体免疫力降低的 病人，
条件致病菌或非致病菌均可引起菌血症、
败血症。两次血培养结果为同一种细菌，患者< br>2~3
周后血中抗体效价明显升高，应该作为菌
血症的病原菌处理。

厌氧菌培养应作为血培养检查的常规方法，特别是疑为厌氧菌感染者。同时还必须注意
L
型细菌 的培养。

2.

脑脊液标本的采集：

对患者进行腰椎穿 刺，采集脑脊液
3~5ml
，盛于无菌试管和血培养瓶中送检。脑脊液标
本尽量在抗生 素治疗前采集，穿刺过程中应严格无菌操作，防止污染。由于脑膜炎奈瑟氏菌
离体后容易自溶，流感嗜血 杆菌及肺炎链球菌容易死亡，故标本采集后应立即送检微生物实
验室。脑膜炎奈瑟氏菌等许多细菌对外界 抵抗力比较弱，应注意保暖、防止干燥和日光直射。
为防止采集的标本浑浊，最好进行“床边接种”，否则影响培养的阳性率。为了提高细菌的培
养的阳性率，可在接种血平板、巧克力平板的同时，接 种血液增菌培养基。

3.

尿液标本的采集：

中段尿采 集法是临床最常见的采集方法，以晨尿为宜。女性病人在采样前应先用肥皂水
或
0.1%
的高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口：男性病人翻转包皮，用肥皂水清洗尿道口。对
留置导尿者，可用 碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用针管的细针头斜穿入管壁采集尿液：或
拔去闭式引流的集尿袋，弃去导 尿管前端的尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。切忌
直接从集尿袋的下端关口留取标本。

确定菌尿是来自肾脏，可通过尿管采集肾盂尿。充分冲洗膀胱，以最后一次冲洗尿作为
对照，然 后将导尿管插入输尿管，做好左右标记，收集
3
次尿液。如果尿管细菌数比对照尿
细菌 数多或第三次尿比第一次多，则该细菌可能来自肾脏：相反，第一次尿菌数多余第三次
尿菌数，则可能来 自膀胱。