小金樱化验室操作规程

2021年1月27日发(作者：丘疹性荨麻疹)
昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

化验室管理规定

1.

遵守化验室的各项规章制度，认真完成检测任务，对自己承担项目的检测结
果负责；

2.

严格按照本操作规程进行各项检测工作，确保检测数据的准确可靠；

3.

填写检测原始记录，任务完成后及时进行数据处理，并进行校对和审核；

4.

及时报告实验结果，并提出合理建议；

5.
熟悉所用检测仪器设备的性能，严格执行操作规程，使用前后认真检查，并
填写《仪器设备使用情况 记录表》
，负责所用仪器设备的保管、保养及自校
工作，上报仪器设备的检定、维修计划；
6.

化验人员进入化验室必须更换工作服，
并在化验室不允许干与工 作无关的事
情，如吃东西、高声喧哗等；

7.

每天下午下班前打 扫化验室卫生，
每天完成实验后化验室用紫外线灯照射三
十分钟。

8.

密切配合领导安排的各项工作；

9.

负责化验室的内务、卫生和安全；




化验室主任的岗位职责与权限

1
．职责与权限


1.1
负责化验室日常检测工作的管理与协调；

1.2
负责监督检查化验员的日常检测工作；

1.3
负责培训考核化验员的日常工作与业务水平；

1.4
负责发现和消除检测工作中存在的安全隐患；

1.5
负责标准菌株、化学、生物制剂的管理；

1.6
组织完成上级及场区领导安排的各项临时性工作；

1.7
负责就检测项目的试验、检测。

2.

知识与能力

2.1
具备丰富的家禽微生物检验专业知识及实践经验；

1

昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

2.2
具有一定的工作能力；

2.3
具有基本的管理及协调能力。




化验员的岗位职责与权限

1.
岗位职责与权限

1.1
负责按照标准检测程序进行样品的制备与检测；

1.2
负责孵化场、养禽场环境、器具、设备、水样、空气等的微生物检测；

1.3
负责对养禽场血样、种蛋的检测；

1.4
及时、准确、详细的做好原始记录并出具、传递化验结果；

1.5
负责完成化验室的各项临时性工作；

1.6
配合协调场区的其他部门工作。

2.

知识与能力

2.1
具备丰富的检验专业知识；

2.2
具有一定的工作能力；

2.3
具有对检测项目进行检测、分析、判断的能力。




实验室玻璃器皿的洗涤程序

1.
目的：确保实验室所用玻璃器皿的洁净，规范玻璃仪器的洗涤及存放。
.
2.
范围：实验室内使用的玻璃仪器。

3.
程序：

3.1

玻璃仪器的洗涤

3.1.1
常用洗涤液的配制和使用方法

3.1.1.1
铬酸钾
-
浓硫酸溶液
（
100g/L
）
（洗液）：称取化学纯重铬酸钾
100 g
于烧
杯中，加入
100ml
水，微加热，使其溶解。把烧杯放于水盆中 冷却后，慢慢加入
化学纯硫酸，边加边用玻璃棒搅动，防止硫酸溅出，开始有沉淀析出，硫酸加到
2
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SOP
）

一定量沉淀可溶解 ，
加硫酸至溶液总体积为
1000ml
。
该洗液是强氧化剂，
但氧化
作用比较慢，
直接接触器皿数分钟至数小时才有作用，
取出后要用自来水充分冲
洗
7
次～
10
次，
最后用纯水淋洗
2
～
3
次。
如果使用过久或 受到强烈的还原性物
质污染，
以致整个液体变为绿色时，
则其中绝大部分的高价铬盐已 被还原成为低
价的硫酸铬，此时洗涤液不再具有氧化力，不宜再用。应集中进行处理，以回收
铬 。

3.1.1.2
肥皂洗涤液、碱洗涤液、合成洗涤剂洗涤液
：配制一定 浓度，主要用于
油脂和有机物的洗涤。

3.1.1.3
氢氧化钾
-
乙醇洗涤液
（
100g/L
）：取
100g
氢氧化钾，用
50ml
水溶解后，
加工业乙醇至
1L
，它适用洗涤油垢、树脂等。

3.1.1.4
盐酸乙醇溶液
：
1
份盐酸和
2
份 乙醇的混合物，
用以洗涤有机试剂染色的
器皿。

3.1.2
．
玻璃仪器的洗涤方法

3.1.2.1
常规 洗涤法
：
对于一般的的玻璃仪器，
应先用自来水冲洗
1
～
2
遍除尘后，
如用强酸性氧化剂洗涤时，
应将水沥干，
以免过多地耗费洗液的氧 化力。
若用毛
刷蘸取热肥皂液
（洗涤剂或去污粉等）
仔细刷净内外表面，尤其应注意容器磨砂
部分。然后边用水冲边刷洗至看不出肥皂液时，用自来水冲洗
3
～
5
次，再用蒸
馏水或去离子水充分冲洗
2
～
3 次。洗净的清洁玻璃仪器上应不挂水珠。洗涤时
应按少量多次的原则用水冲洗，
每次充分振 荡后倾倒干净。
凡能用刷子刷洗的玻
璃仪器，
都应尽量用刷子蘸肥皂液进行洗刷，但不能用硬质刷子猛力擦洗容器内
壁，
因易使容器内壁毛糙，
易吸附离子或其它杂 质，
影响测定结果或者难以清洗
而造成污染。

3.1.2.2
不
便刷洗的的玻璃仪器的洗涤方法
：可根据污垢的性质选择不同的洗涤
液进行浸泡或共煮 ，再按常法用水冲净。

3.2

玻璃仪器的干燥：将洗净的玻璃仪器倒置在 滴水架上或专用柜内控水晾干。
如急用时，可置于
110
～
120
℃ 的清洁烘箱内烘烤
1
小时左右。

4
．
玻璃仪器的保存
：

4.1
将干净的玻璃仪器倒置于专用柜内，关闭柜门防止落尘。

3
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）

4.2
凡有配套塞、盖的玻璃仪器都必须保持原装配套，不得拆散使用和存放。




实验室常用无菌器皿的灭菌和管理

1.
目的：提供无菌器皿的灭菌和管理方法。

2
．灭菌方法：

2.1
玻璃器皿的包装和灭菌

2.1.1
玻璃器皿的包装

磨口瓶：
将清洗干净的磨口瓶瓶盖倒置于磨口瓶上，
用一层报纸包装好再用线
绳包扎。

培养皿：将清洗干净直径为
90mm
的培养皿
10
个一包（直径为
75mm
的培养皿
12
个一包）用一层报纸包装或置于平皿 专用灭菌桶内。

吸管：将清洗干净的吸管用报纸单个缠绕包装。

2.1. 2
将包装好的玻璃器皿做好标识置于
121
℃高压蒸汽灭菌
15
分钟 。

2.2
塑料制品的包装和灭菌


将清洗干净的塑料 制品装入适当的容器中，
121
℃高压蒸汽灭菌
15
分钟。

2.3
橡胶制品的包装和灭菌

将清洗干净的橡胶制品装入适当的容器中，< br>121
℃高压蒸汽灭菌
15
分钟。

2.4
解剖器械及其他金属、陶瓷类用品的包装和灭菌

将解剖器械及其他 金属、陶瓷类用品分别包扎或置入适当的容器中，
121
℃高
压蒸汽灭菌
15
分钟。

3.

管理方法：

将包装好未灭菌或灭 菌的玻璃器皿分别放入
指定、
有标识
的区域，
避免出现混
拿、错拿现 象。








4
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SOP
）

实验室培养基进货检验

1.

目的：提供培养基进货检验的标准操作方法。

2.

相关材料：待确认培养基、标准菌种（特定）
、培养箱、已确认合格的培养基

3.

操作规程

3.1
每次进货后，
先将干粉培 养基放入待确认区域内，
并作相应标识，
严禁使用。

3.2
对于初次进货的干粉培养基，可直接用相关的菌种进行检测。

3.3
已确认合格并使用过的干粉培养基，按其使用说明配制后进行高压灭菌，待
培养基冷却到
50
℃时，倾注平板待用。

3.4
把该培养基所检测的目标菌，按无菌操 作转接到事先配制好的培养基上，根
据该种菌株在该培养基的培养特性进行培养（一般
37℃，
24
～
48h
）
，观察
标准菌种在培养基上生长是 否良好，菌形、色泽、质地、大小是否符合该菌
特征、颜色变化是否明显、生化试管培养基是否有产气、 产酸等状态。

3.5
经检测确认目标菌种特征能够合格后，
再次按
3.4
的方式用新进培养基与已
确认合格并使用过的干粉培养基作平行对比实验，
观察 其生长变化是否一致
或相似。

3.6
确认合格后，将该种培养基转入待用区 域，并作相应的标识。不合格的培养
基，有质量负责人将信息反馈采购部门等候处理。




实验室菌种的处理和保存

1.

提供菌种的处理和保存标准操作方法。

2.
相关材料：

培养基、菌种、接种环、超净工作台、
36
±
1
℃培养箱、
4℃冰箱

3.
操作规程

3.1
菌种的处理

3.1.1
无菌操作打开安甄瓶，用接种环挑取一环冻干菌，放入装有灭菌肉汤试管
中，做好标示，置于
36
±
1
℃培养
24
±
2h< br>。

3.1.2
将培养后的肉汤培养物接种于装有灭菌肉汤试管中，
进行二代培养，
置于
5
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SOP
）

36
±
1
℃培养
2 4
±
2h
。

3.1.3
依照
3.1.2
的模式对菌种进行
3
代、4
代的转接培养
.
3.2
短期保存

3.2.1
将处理好的菌种肉汤培养物接种于琼脂斜面培养基上，做好标示，记清菌
种名称及接种时间，在
36
±
1
℃培养
24
±
2h
。

3.2.2
将斜面培养物用包装纸包好后，置于
4
℃冰箱内保存。

3.2.3
每三个月对保存菌种进行复壮一次，同时检查菌种特性。

3.2.4
菌种的复壮于特性检查

3.2.4.1
无菌操作将斜 面培养物转接至已灭菌的装有肉汤的试管中，做好标示，
置于
36
±
1
℃培养
24
±
2h
。

3.2.4.2
将肉汤培 养物转接至已事先备好的琼脂斜面上，
每支肉汤培养物接种三
管斜面，做好标示，然后置于36
±
1
℃培养
24
±
2h
。
3.2.4.3
取一管斜面培养物，
根据该培养物的类别采用与培养物相对应的检测程序，对培养物的特性进行检查并做好相应记录。

3.3
长期保存

3.3.1
将处理好的菌种肉汤培养物接种于半固体培养基上，
做好标示，
记清菌种
名称及接种时间，在
36
±
1
℃培养
24
±
2h
。

3.3.2
将半固体培养物用包装纸包好后，置于
4
℃冰箱内保存。

3.3.3
每一年对保存菌种进行复壮一次，
同时检查菌种特性，
检查方法同
3.2.4.3
进行。

3.4
对存放菌种的冰箱每周进行检查一次，并将检查情况做好记录




细菌抹片、制备及染色

1
．目的：观察细菌形态结构及鉴别的操作方法

2
．相关材料：

玻片、
5
％石炭酸液、龙胆紫粉末、碘片 、碘化钾、
95
％酒精、碱性复红粉末、
美兰、
0.01%
氢氧化钾 溶液、瑞氏染色剂粉、白甘油、中性甲醇、姬姆萨氏染色
剂粉末、甲醇、显微镜、试管架、酒精灯、接种 环、药匙、称量纸、电子称、待
6
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）

试菌、灭菌蒸馏水、吸水纸、香柏油

3
．细菌抹片的制备

3.1
玻片准备：载玻片应清晰透明，洁净而无油渍，滴上水后，能均匀展开，附
着 性好。如有残余油迹，可按下列方法处理：

3.1.1
滴上
95
％酒精
2
～
3
滴，用洁净纱布揩擦，然后在酒精灯上轻轻脱过几次。

3.1.2
若上述方法未能去除油渍可再滴
1
～
2
滴冰醋酸 ，用纱布擦净，再在酒精灯
上轻轻通过。

3.2
抹片：所用材料不同，抹片方法亦有差异

3.2.1
液体材 料（如液体培养物、血液、渗出液、乳液）可直接用灭菌接种环取
一环材料与玻片的中央均匀涂成适当大 小的薄层。

3.2.2
不是液体材料（如菌落、脓、粪便等）则应先用灭菌接种环取 少量生理盐
水或蒸馏水，置与玻片中央，然后再用灭菌接种环取少量材料，在液滴中混合，
均匀 涂布成适当大小的薄层。

3.2 .3
组织脏器材料，先用镊子夹持局部，然后以 灭菌或洁净剪刀取一小块，夹
出后将其新鲜切面在玻片上压印或涂成一薄片。

3.2.4
如有多个样品同时须要制成抹片，只要染色方法相同，亦可以在同一张玻
片上有序的排好，
做多点涂抹，
或者先用蜡笔在玻片上划分成若干小方格，
每方
格涂抹一种样品，需要保留的样本片，应贴好标签，注明菌名、材料、染色方法
和制片日期等。

3.2.5
上述涂片应让其自然干燥。

3.2.6
固定：有两类固定方法


3.2.6.1
火焰固定：
将干 燥好的抹片，
使涂抹面向上，
以其背面在酒精灯上来回通
过数次，略作加热（但不能太 热，以不烫手背为度）进行固定。

3.2.6.2
化学固定：血液、组织、脏器等 抹片要作吉姆萨染色时，不用火焰固定，
而应用甲醇固定，可将已干燥的抹片侵入甲醇中
2～
3
分钟，取出晾干：或在玻
片上滴加数滴甲醇使其作用
2
～< br>3
分钟后，自然挥发干燥，抹片如作瑞氏染色，
则不必先作固定。染料中含有甲醇，可以 达到固定的目的。

4
．常用的染色方法及

染色液的配制与操作：


4.1
美兰染色液
：
美兰
0.3g
、
95%
乙醇
30ml
、
0.01%
氢氧化钾溶液
100ml.
将美兰
溶解与乙醇中，然后与氢氧化钾溶液混合。

7
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4.1.4
染色法：抹片在火焰固定后，加染液于玻片上，染色
3
～
5
分钟。水洗、吸
干、镜检。

4.2
瑞氏染色液
：瑞 氏染色剂粉
0.1g
、白甘油
1.0ml
、中性甲醇
60ml
，置染料于
一个干净的乳钵中，
加甘油研磨至完全细末，
再加入甲醇使其溶解，溶解后盛于
棕色瓶中一星期，过滤于中性的棕色瓶中，保存于暗处，
，该染色剂保存时间愈
久，染色的色泽愈鲜。

4.2.1
染色法：涂片任其自然干燥
;
加染色液约
1ml
于涂片上，染色
1
分钟，使标
本被染色液 中甲醇所固定

：再加上与染色液等量的磷酸盐缓冲液或蒸馏水（或
自来水）用口吹气 ，使染色液与蒸馏水充分混合，并防止染料的沉淀，经
5
分钟
左右，使表面显金属的闪 光；冲洗、洗干、镜检。





注：
磷酸二氢 钾缓冲液：
磷酸二氢钾
6.63g
、
无水磷酸钠
2.56g
、
蒸馏水
100ml
。

4.3
姬姆萨氏染色液
：取姬姆萨氏染色剂粉末
0.6g,
，加入甘油
50ml
，置于
55
～
60
℃温度中
1.5
～
2
小时后，加入甲醇50ml
，静置一日以上，过滤后即可应用。

4.3.1
染色法：加 姬姆萨氏染色液
10
滴于
10ml
蒸馏水中，配成稀释的溶液，所
用 蒸馏水必须是中性或微碱性（必要时加
1%
碳酸钠液一滴于水中，使其变为微
碱性）< br>；
抹片任其自然干燥，
浸入盛有染色液的染色缸中，
染色
30
分钟或者染色
数小时，过夜亦可；水洗、洗干、镜检。

4.4
革兰氏染液
的配制：

4.4.1
龙胆紫原液：龙胆紫粉末
5g
，加
95
％酒精
100ml
。

4.4.2< br>石炭酸龙胆紫液：
龙胆紫原液
10ml
、
5
％石炭酸液
90ml
混合，
虑过后备用。

4.4.3.
碘溶液（鲁格氏液）
：碘片
1g
、碘化钾
2g
、蒸馏水
300ml






先将碘化钾
2g
加水
30ml
使其溶解，再将研碎的碘片
1g
加入，完全溶解
后再加足量的蒸馏水 ，使全量为
300ml
。

4.4.4
脱色液：
95%
酒精

4.4.5
稀释复红：

碱性复红原液：碱性复红粉末
10g
，加
95
％酒精
100ml
。

石炭酸复红液：碱性复红原液
10ml,
5
％石炭酸液
90ml< br>混合
,
放置过夜后虑过，
储褐色瓶中备用。

稀释石炭酸复红 液：石炭酸复红液
10ml
、蒸馏水
90ml
混合后，即为稀释复红。

4.4.6
革兰氏染色法

4.4.6.1
在已干燥固定好的 抹片上，滴加龙胆紫染色液，经
1
～
2
分钟，水洗。

4. 4.6.2
加革兰氏碘溶液于抹片上媒染，作用
1
～
3
分钟，水洗。

4.4.6.3
加
95
％酒精于抹片上脱色，约
30秒～
1
分钟，水洗。

4.4.6.4
加稀释碳酸复红
10
～
30
秒钟，水洗。

8
昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

4.4.6.5
吸干、镜检。观察细菌大小、形态和颜色（革兰氏阳性菌呈紫色，革兰氏
阴性菌呈红色）
备注：
在进行各种染色时都应注意，
当抹片滴上染色液后，
不可直接将剩余染液< br>倾去，应用水连染液一起充分洗去，然后进行下一步骤，以免发生沉渣黏附，影
响染色效果。



实验室菌落总数检测

1
．目的：提供平板菌落计数的标准检测方法

2
．相关材料：

2.1
仪器设备：恒温培养箱
36
±
1
℃，吸头（
100
微升）微量移液器，直径为
90
毫 米的培养皿
,
试管架

2.2
培养基和试剂：平板计数琼脂，
9
﹪生理盐水，
75
﹪酒精棉球

3
．操作规程

3.1
将采集到的样品逐一编号、
登记，
不能及时检测的放置于
- 4
℃冰箱保存不得
超过
3
小时。

3.2
超净工作台用紫外灯照射三十分钟后方可使用。

3.3
检测时先用
75
﹪酒精棉球擦拭双手。

3.4
每个样品 液混匀后用微量移液器吸取
100
微升注于灭菌培养皿内，做好标
识。每个样更换一次 吸头，避免交叉污染。

3.5
对于污染严重的样品，作好倍比稀释后在移入平皿。

3.6
同时做空白对照，

3.7
移夜完毕后把
45-50
℃的平 板计数琼脂倾注于灭菌培养皿内，每皿约
12
～
15ml
，在水平面上，顺时 针、逆时针各轻轻旋转混匀培养皿
3
圈，避免培养基溅
于皿盖上。每个样品从开始做到 结束，时间不得超过
20min
。

3.8
待培养基完全凝固后 ，翻转平皿，置于
36
±
1
℃培养箱内，培养
24h
。
3.9
培养后，立即计数每个平板上的菌落数，
25
～
2 50
个菌落为合适范围。如
果不能立即计数，应将平皿存放于
0
～
4
℃，但不能超过
24h
。

3.10
若平板上出现链状菌 落且菌落之间没有明显界限，每一条链作为一个菌落
计，不能把链上生长的各个菌落分开来数。

9
昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

3.11
若平板上菌落密布，可选取平板的
1/4
或
1/8
计数

3.12
计数和报告：
将所数得的菌落个数乘以相应的稀释倍数。
固体以克 为单位，
液体以毫升为单位。表面涂擦液以平方厘米为单位，消毒后种蛋以?3.5cm
规板< br>计。

3.13
查阅相关的限定标准，给出检测样品客观评价。




细菌对抗菌药物的敏感试验

1
．目的：提供细菌对抗菌药物的敏感试验的标准采集与操作方法。

2
．相关材料：

无菌剪刀、无菌搪瓷盘、消毒剂、无菌容器
(平皿、磨口瓶、包装袋
)
、酒精
灯、接种环、打火机、
75%
酒 精棉球、一次性手套、普通营养琼脂培养基或
特殊培养基、药敏纸片
(
购买或自制)
、待测病料、无菌眼科镊、无菌试管、
试管架、试管塞、记号笔、
2ml
或
5ml
一次性注射器、超净工作台、
37
℃±
1
℃恒温 培养箱、带刻度直尺

3
．操作步骤：

样品的采集可由部门委托本室人员采集、也可由部门送检。

3.1
要求待检病料新鲜、无污染。

3.2
采样方法：首先将病、 死禽放在盛有消毒液的瓷盆中浸泡
5
分钟，以去除禽
体表面杂菌。让其仰卧，然后用无 菌剪刀剥离皮肤，再打开体腔，剖开腹腔后，
注意不能损坏肠道。
再用另一把无菌剪刀灼烧后烫 烙需采集脏器表面，
并在烧烙
部位刺一孔，
然后用经酒精灯灼烧的的铂金接种环的铂耳 伸入孔内，
取少量组织
或液体，
以无菌操作划线接种于普通营养琼脂或特殊培养基上，
做好标记，
按临
床判断标准进行有氧或无氧培养
18-24h
（37
℃±
1
℃）后拿出备用。

3.3
采样数量：以饲养场为单位，合为一个样检测。

3.4
样品 的标识：要求有样品来源样品名称、样品数量、样品编号、抽样日期、
检测项目等内容。

3.5
样品的送检：要求所采集的样品以最快最直接的途径送往化验室。

10
昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

4
．操作规程：

4.1
待测病料的分离培养：

4.1.1
在无菌操作条件下，将待测病料（含有典型临床症状部分）用平板划线分
离法接种于 普通营养琼脂培养基或特殊培养基上（血琼脂、
ss
琼脂、麦康凯琼
脂）
，于
37
℃±
1
℃恒温培养箱中培养
18-24h
后备用。
4.1.2
用灼烧过的接种环以无菌操作从普通营养琼脂培养基或特殊培养基蘸取
单个典型的菌落一环接种于肉汤培养管中，
于
37
℃±
1
℃恒温培 养箱培养
6h
后，
4
℃保存备用。

4.2
操作步骤：

4.2.1
将培养
6h
后的肉 汤培养物充分摇匀，用灭菌的棉棒蘸取少量菌液在普通
营养琼脂或者特殊培养表面均匀涂布。

4.2.2
用无菌眼科镊，镊取各种购买或自制的药敏纸片，分别贴于①中培养基表
面 ，
并用镊子轻按纸片使药敏纸片与培养基表面密贴；
药敏纸片应在培养基
表面均匀分布 ，
一般可按培养基中央贴一种纸片，
外周以等距离贴若干种纸
片，这样一个（直径90mm
）平板可贴
8
个药敏纸片；同时在纸片与培养皿
底部相应的位置 作好标记；
最后将贴好纸片的平板倒置放置于
37
℃±
1
℃恒
温箱中培养
18-24h
后，取出观察结果。

4.2.3
结果观 察：凡对待测细菌有抑制能力的药敏纸片，在其周围会出现一个无
菌生长的圆圈，称为抑菌圈。可用带刻 度直尺测量抑菌圈的大小，抑菌圈越大，
说明该菌对此药敏感度越大，反之越小，则说明该菌对此药具有 耐药性。

5
．结果判定：

判定结果时，应按抑菌圈直径大小（以
mm
为计量单位）作为判定敏感度高
低的标准，具体的判定标准见下表：

表
1.
药敏试验判定标准

抑菌直径
敏感度

（
mm
）

20
以上

极敏

15-20
高敏

10-14
中敏

10
以下

低敏

0
不敏







6
．记录与报告：

操作过程中做好记录，
根据检测结果填写报告单，
由相关责任人签名，
及时传递
到相关部门。

11
昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

药物最佳抑菌浓度的选择

1
．目的：提供药物最佳抑菌浓度选择的标准操作方法

2
．相关材料：

试管、
试管塞、
试管架、
培养皿 、
酒精灯、
0~1000ul
移液器、
接种环、
1ml
吸头 、药匙、称量纸、万分之一天平、超净工作台、
37
℃±
1
℃恒温培养
箱、营养肉汤、营养琼脂、琼脂糖、待试菌、抗菌药、灭菌蒸馏水

3
．操作规程

3.1
试剂的制备：

3.1. 1
不同浓度药液的制备：将准确称量的不同剂量抗生素溶于等量的灭菌蒸馏
水中，稀释成所需的 浓度。

3.1.2
不同浓度药液培养基的制备：
用移液器取
3.1 .1
中不同浓度的药液
1ml
以
无菌操作注入无菌的空培养皿内，
然 后倾注融化并冷却至
45
℃的定量琼脂，
随即用手掌搓转振荡混匀，待琼脂凝固后，倒 转放置
4
℃
-8
℃冰箱内备用。

3.1.3
待测 细菌的分离与保存：将待检病料用平板划线分离法培养
18-24h
得到
的单个菌落以 无菌操作接种于营养琼脂斜面上（内含
4
?琼脂粉）
，于
4
℃
-8
℃冰箱中保存。

3.1.4
待测细菌悬液的制备：
用灼烧过 的接种环以无菌操作从营养琼脂斜面上蘸
取适量被测菌接种于肉汤培养管中，
37
℃±
1
℃温培养箱培养
6h
。

3.2
操作步骤：

3.2.1
将不同浓度药液培养基平板从冰箱中取出，放置37
℃±
1
℃恒温培养箱中
数分钟以蒸发掉培养基表面的凝结水。

3.2.2
按
3.1.4
制备好待测细菌悬液，置
37
℃±
1
℃温培养箱培养
6h
后，连同
3.1.2
中平板放于 洁净工作台。

3.2.3
在无菌条件下，
用接种环取一环待测菌悬液接种于 不同浓度药液培养基平
板上（采用平板划线分离培养法）
。

3.2.4划线完毕，灼烧接种环，将培养皿倒转放置于
37
±
1
℃恒温培养箱中培 养
18-24h
后观察。

12
昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

4
．结果判定
:
不同药液浓度平板在恒温培养箱中培养
24h后，
观察结果。
凡平板中无细菌
生长者，
该平板所含的药液浓度为最低抑 菌浓度
（
MIC
）
。
一般以最低抑菌浓度作
为细菌对药物的 敏感浓度。

5
．记录与报告：

操作过程中做好记录，
根 据检测结果填写报告单，
由相关责任人签名，
及时传递到相关部门。




消毒剂消毒效果的检测（方法一）

1.

目的：提供检测消毒剂消毒效果的标准操作方法

2.

相关材料：

试管、试管塞、试管架、培养皿、酒精灯、
0~1000ul< br>移液器、接种环、
1ml
吸头、药匙、称量纸、万分之一天平、超净工作台、
3 7
℃±
1
℃恒温
培养箱、营养肉汤、营养琼脂、待试菌、消毒剂、灭菌蒸馏水

3.

操作规程

3.1

取一个地方 菌，在超净台中用灭菌接种环接种于营养肉汤中，于
3
7
℃培养
24
小时；

3.2

把需要检测的消毒剂分别按不同浓度依次稀释好，置于灭菌试管中待用；

3.3

分别吸取
2
0
微升菌液（根据菌液浑浊度，菌多浑 浊就加
20
微升，菌少就加
50
微升）
放入灭菌平皿中，
换 枪头后再分别吸取
100
微升
3.2
中不同浓度的
消毒液依次放入不 同的平皿中，在桌面上轻轻晃动，混合均匀，作上标记，
室温下反应
30
分钟。

3.4

在上述
3.3
平皿中依次倒入约
45-50
℃的营养琼脂，
在桌面上轻轻晃动，
凝固
后于
37
℃ 恒温箱内培养
24
小时，计细菌总数。

3.5

结果判定 ：根据细菌总数的多少来判定消毒剂的消毒效果。再结合生产实际
和消毒剂的价格及稀释配比，来选择最 合适的消毒剂。




消毒剂消毒效果的检测（方法二）

1
、
目的
：提供检测消毒剂消毒效果的标准操作方法

2
、
相关材料
：

试管、试管塞、试管架、三角瓶培养皿、 酒精灯、
0~1000ul
移液器、接
种环、
1ml
吸头、
药匙、
称量纸、
万分之一天平、
超净工作台、
37
℃±
1< br>℃
恒温培养箱、营养肉汤、营养琼脂、待试菌、消毒剂、灭菌蒸馏水

13
昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

3
、

操作规程

3.1
将从孵化场和商品鸡场分离到的菌株分别接种于营养肉汤，
置于
37
℃恒温箱
培养
6
～
12
小时，连 续传代
2
次，备用；

3.2
将试管、刻度吸管、平皿等灭菌，备用；

3.3
将灭菌后的 营养肉汤分装成
4.5mL/
管，置
37
℃恒温箱培养
24h
，备用；

3.4
将被检测的消毒剂，按照各消毒剂推荐使用浓度进行稀释备用。

3. 5
分别取上述各浓度的消毒剂
0.5mL
，加入到
4.5mL
营养肉 汤中，混匀。

3.6
分别取从养殖场和孵化场分离的菌株复壮培养液
0.0 25mL
，分别加入到被测
消毒剂的各稀释浓度的肉汤培养基中，
置
37℃恒温箱培养
24h
，
同时设细菌阳性
对照和空白阴性对照，观察并记录 结果；

3.7
用接种环分别取各被测消毒剂肉汤培养液，接种于普通营养琼脂上，置
37
℃
恒温箱培养
24h
，观察并记录结果。

4
、
结果判定
：

4.1
观察肉汤培养基的混浊度 ，有细菌生长时，可见肉汤混浊，用
“
﹢
”
表示；无
细菌生长时，肉 汤清晰透明，与空白阴性对照一致，用
“
﹣
”
表示。

4. 2
在普通营养琼脂培养基中有细菌生长时，
用
“
﹢
”
表示；
无细菌生长时，
用
“
﹣
”
表示。

5
、
实验结果分析

5.1
对实验菌株敏感性由高到低的消毒剂分别是：



5.2
假如养殖场用水稀释，同样
配制
1
吨消毒剂（即
1000L< br>）
，这时所需要花费的
消毒剂成
本
分别为：


消毒剂成本由低到高分别为：




球虫卵囊的检测

1
．目的
/
目标：提供球虫卵囊的检测操作方法。

2
．
相关材料：

饱和盐水

电子称
150
毫升三角瓶

红细胞计数器

显微镜

载盖
玻片

移液枪

吸头（剪掉尖头）

3
．操作步骤：

3.1
将
4
克鸡粪加到
56
毫升饱和盐水中混合摇匀静置

3.2
调试显微镜

3.3
将准备好洁净血球计数板盖上盖玻片一块

14
昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

3.4
用灭菌 吸头吸取一小滴稀释液（不宜过多）滴入片子的一侧，让菌液自行进
入计数室也可用吸水纸从另一侧吸过 一般计数室便可以充满，注意不要产生气
泡。

3.5
放入载物台，先用低倍镜找到视野，再用
400
倍进行计数。

3.6
找到视野后从
25
个中方格选
5
个进行计数（可选
4
个角和中间）

3.7
位于格线菌体一般只数上方和右边线上的算出
5
个方格的总数

3.8
一毫升中球虫的含量计算公式：











A/5
×
25
×
15
A
为
5
个中方格球虫总数

4
检测标准：

每克粪便中球虫含量不得超过
3000
。




鸡白痢平板凝集试验

1
．目的：提供鸡白痢（或鸡伤寒）平板凝集试验的标准操作方法

2
．相关材料：

鸡白痢鸡伤寒多价平板凝集抗原、鸡白痢强阳性血清、鸡白 痢弱阳性血清、
鸡白痢阴性血清、待检血样、玻璃板、针头、离心机、酒精灯、火机、酒精棉、
微量移液器、吸头等

3
．操作步骤：

3.1
操作方法

取一块洁净的玻璃板，用酒精棉擦拭后，点火燃尽在玻璃表面的酒精。

在
2 0
℃
-25
℃环境条件下用定量移液器吸取血清
30ul
滴加在洁净 的玻璃板
上，然后用微量移液器取
30ul
抗原与血清充分混合均匀，并使混合液散开 至直
径约
2cm
时不断摇动玻璃板，计时在
2
分钟内判定结果。同时 设阳性血清、弱
阳性血清、阴性血清对照。

3.2
结果判定

3.2.1
判定标准如下

15
昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

①
100%凝集（
++++
）
：紫色凝集块大而明显，混合液稍浑浊。

②
75%
凝集（
+++
）
：紫色凝集块较明显，混合液有轻度浑浊。< br>
③
50%
凝集（
++
）
：出现明显的染色颗粒，混 合液较浑浊。

④
25%
凝集（
+
）
：仅出现少量 颗粒，混合液浑浊。






⑤
0%
（—）
：无凝集颗粒出现，混合液浑浊。

3.2. 2
在
2
分钟内抗原与强阳性血清混合后应呈
100%
凝集（
++++
）
、与弱阳性血
清混合后应呈
50%
凝集（
++< br>）
、与阴性血清混合后不凝集（—）判试验有效。

3.2.3
在2
分钟内被检血清与抗原之间出现
50%
（
++
）以上凝集者为 阳性，不发
生凝集的则为阴性。介于两者之间的为可疑反应（
50%
—
0%< br>）此时应该将该鸡
隔离饲养，一个月后再做检测，若仍为可疑反应，按阳性反应判定。

4
．记录与报告：

操作过程中做好记录，根据检测结果填写报告单。

分析实验结果，
注意沙门 氏菌污染动态变化趋势，
即时判断鸡场沙门氏菌污
染情况。由相关责任人签名，及时传递到相关 部门。




养禽场鸡舍环境、设备、器具表面及空气样品的采集与检测

1
．目的：提供 鸡舍环境、设备、器具表面及空气样品采集与检测的标准操作方
法

2
．
相关材料：装
10m l
灭菌生理盐水的灭菌试管、
灭 菌棉签、酒精灯、规板
（
10
㎝
2
）
、打火机、试管架、< br>75%
酒精棉球、记号笔、泡沫箱、剪刀、平板计数
琼脂、
90
㎜培养 皿。

3.
环境、设备、器具表面及空气样品采集的方法

3.1
环境、设备、器具表面样品的采集

3.1
．
1
两名化验员 以生产区工人入场程序进入鸡舍。用
75%
酒精棉球擦拭双手。

3.1.2

打开包装生理盐水试管，
摆设与试管架架上，
一人在酒精灯上灼烧规板后，
放于待测物表面。

3.1.3

另一人拿出一支试管，
取出一支棉签在靠近酒精灯处打开试管塞，
用灭菌
16
昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

棉签蘸取少量生理盐水，
盖好管塞，
上下左右擦拭规板内面积
2
遍后，
打
开管塞将棉 签在管口处用剪刀剪断，塞好塞子做好标识。

3.1.4

采下一个样时再次灼烧规板，更换试管。

3.1.5

鸡舍地面采样时，须选取鸡舍五点（四个角及中央）是样品具有代表性

3
．
2


空气的采样法

将检查合格 的倒有平板计数琼脂的
90
㎜培养皿带入待测鸡舍，在鸡舍四个
角及中央选取
5
～
8
个点各放置一套培养皿。

打开皿盖开始计时，
15
分钟后盖上皿盖，带回化验室置于
36
±
1
℃培养
24h
计数。

表
3.
养鸡场微生物检测标准参考数据











分级

平板上菌数（
进鸡前
）

1
2
3
4
5
0
～
60
61
～
100
101
～
140
141
～
200
201
以上

平板上菌数
（正常养鸡时）

0
～
600
600
～
1000
1000
～
1400
1400
～
2000
2000
以上

评价

优良

安全

注意通风

需消毒

禁止进鸡

表
设备、器具表面微生物检测标准（菌数
/
㎝
2
）

分级

1
2
3
4






17
4.
平板上菌数

0-18
19-36
37-54
54
以上

评价

干

净

轻度污染

中度污染

高度污染

昌邑泰森活禽化验室操作规程（
SOP
）

养禽场水样的采集与检测

1.

目的：提供水样采集与检测的标准操作方法

2.

相关材料：灭菌试管
15
×
15
0
㎜

、灭菌棉签、打火机、试管架、记号笔

3.

操作步骤：

3.1

3.2

3.3

洗净双手并消毒

把灭菌试管打开包装纸，摆于试管架上

用打火机 灼烧待测水笼头，
以杀灭管口的微生物。
拧开水笼头，
让水流
3
～< br>5
分钟。

3.4

打开灭菌试管的塞子，接取
10 ml
左右水，塞好塞子，立即带回化验室检
测，不能立即检测的，保存于
4
摄 氏度冰箱中。

3.5

取井水、池水、河水等地面水样时，须用特制的取样 器，距水面
10-15
厘
米深处取水。

3.6

取鸡舌饮水器和水槽中的水样时，关闭水源，使水静置
30
分钟，用灭菌
的吸管吸取水 样放入灭菌的玻璃瓶中备用。

3.7

3.8

取水样检查前，应将水样充分振摇
25
次。

检测方法同环境、设备表面微生物检测方法。

表
5.
家禽饮用水微生物学标准

级别

优

良

中

差












18
评价

纯水

可饮用水

尚可饮用水

污水

细菌总数
/
毫升

0-10
10-100
1000-10000
10000
以上

大肠杆菌数
/
毫升

0
0
10-50
100