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免疫组化注意事项

作者:陕西保健网
来源:http://www.xapfxb.com/yuer
更新日期:2021-01-25 15:48

小清新的电影-

2021年1月25日发(作者:平新乔)

(

)
注意事项


1.
正式试验时,应分别以阳性对照与阴性对照控制试验条件,待检样品应作一式二份,以
保证实验结果的 准确性。有时本底较高,说明有非特异性反应,可采用羊血清、兔血清或
B
SA
等封闭 。


2.

ELISA
中,进行各项实验条件的选择是很重要的,其中包括
:

(1)
固相载体的选择:许多物质可作为固相载体,
如聚氯乙烯、聚苯乙 烯、
聚丙酰胺和纤维
素等。其形式可以是凹孔平板、试管、珠粒等。目前常用的是
40
孔聚苯乙烯凹孔板。不管
何种载体,
在使用前均可进行筛选:
用等量抗原包被 ,在同一实验条件下进行反应,观察其
显色反应是否均一性,据此判明其吸附性能是否良好。



2)
包被抗体
(
或抗原
)
的选择: 将抗体
(
或抗原
)
吸附在固相载体表面时,要求纯度要好
,
吸附时一般要求
PH

9.0

9.6
之间。吸附温度,时 间及其蛋白量也有一定影响
,
一般多采

4℃18~
24
小 时。蛋白质包被的最适浓度需进行滴定:即用不同的蛋白质浓度
(0.1

1.0
10
μ
g

ml

)
进行包被后, 在其它试验条件相同时,观察阳性标本的
OD
值。选择
OD

最大而 蛋白量最少的浓度。对于多数蛋白质来说通常为
1

10
μ
g

ml



(3)
酶标记抗体工作浓度的选择:首 先用直接
ELISA
法进行初步效价的滴定
(
见酶标记抗体
部份)
。然后再固定其它条件或采取“方阵法”(包被物、待检样品的参考品及酶标记抗体分
别 为不同的稀释度
)
在正式实验系统里准确地滴定其工作浓度。


(4)
酶的底物及供氢体的选择:
对供氢体的选择要求是价廉、
安全、有明 显地显色反应,而
本身无色。
有些供氢体
(

OPD
)
有潜在的致癌作用,
应注意防护。
有条件者应使用不致癌、
灵敏度高的 供氢体,如
TMB

ABTS
是目前较为满意的供氢体。底物作用一段时间后 ,应加
入强酸或强碱以终止反应。
通常底物作用时间,

10-30
分钟为宜。
底物使用液必须新鲜配
制,尤其是
H2O2
在临用前加入。

常见问题处理:

免疫组化常见问题的处理


< br>当免疫组化染色没有出现预期结果时,
应系统地查找原因,
而每一次只能排除一种可能的 原
因。


对照
/
标本无染色


① 确认是否忽略了应该加的某种试剂,包括一抗、二抗、三抗及底物等。

② 确认所有的试剂是否按正确的顺序加入,是否孵育了足够的时间。

③ 对照抗体的标签确认是 否使用了正确的抗体,以及所用的检测系统是否和一抗匹配,这
一点是非常重要的。
比如,如果 一抗是兔来源的抗体,二抗一定要用抗兔的二抗来匹配;或
一抗是小鼠的
IgM
一抗, 二抗必须是山羊
/
兔抗小鼠的
IgM
(不是
IgG
)二抗。

④ 检查抗体所使用的稀释度及稀释溶液。

⑤ 检查抗体的有效期和保存 条件,尤其是标记了酶或荧光素的抗体,现在大多数试剂公司
的抗体均要求在
4~8℃条件下保 存,应避免反复冻融,试剂保存时一定要避免与挥发性有机
溶剂同放一室,以免降低抗体的效价。

⑥ 检查标本的储存条件,最好用已知阳性的标本来同时做阳性对照。

⑦ 检查 色原
/
底物溶液,
最简单的检测方法是将一滴标记有酶的抗体加入到制备好的底物溶< br>液中,
如果底物发生预期的颜色变化,则可排除底物的因素。
需要注意的是,有些底物在 制
成工作液后应在一定时间内用完,否则会失效。

⑧ 检查冲洗液是否和反应试剂匹 配,
溶液的
pH
值很重要,
与过氧化物酶底物匹配的溶液中
不应含有 叠氮钠。

⑨ 检查复染剂和封片剂是否和所使用的色原匹配。


弱阳性


如果阴性对照没有染色而阳性对照标本弱阳性,除了考虑上述因素外,还应考虑:

① 标本的固定方式,不当的固定方式或固定时温度过高,都会影响到所检测的抗原的数量
和质量。

② 不适当的抗原修复方式,由于石蜡切片在制作的过程中固定剂对抗原的封闭作用,必须
用抗 原热修复或酶消化或两种同时使用的抗原双暴露法,
至于使用哪一种方法,
应参照生产
厂家的说明,同时结合标本的具体情况而定。

③ 抗体的稀释度是否过高或者孵育的温度/
时间是否正确。
一般试剂生产厂家都会对试剂给
出一定的使用范围,
但 是由于使用者的标本来自各种组织,
处理过程也不尽相同,
所以应参
照使用范围,对所 使用的一抗进行梯度测试,找出最佳的使用浓度。

④ 切片上遗留了过多的冲洗液,当抗体加至切片上时,等于人为地对抗体进行了进一步的
稀释。

⑤ 孵育时切片是否放置水平,否则会导致抗体流失。如果阴性对照没有反应,阳性对照反
应良 好,
而标本弱阳性,
则可能是由于阳性对照不是同一种组织、
或固定方式不同等原因所
致。


非特异性染色


① 是否有效地去除了内源性酶和生物素。应注意的是,并不是每一种组织均需要进行此步

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