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免疫组化原理及步骤
免疫组化操作规程
一、实验原理与意义
免疫组织化学又称免疫细胞化学,
是指带显 色剂标记的特异性抗体在
组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈色反应,
对相应抗原< br>进行定性、定位、定量测定的一项新技术。它把免疫反应的特异性、
组织化学的可见性巧妙地结合 起来,借助显微镜
(
包括荧光显微镜、
电子显微镜
)
的显像和放大作 用,在细胞、亚细胞水平检测各种抗原
物质
(
如蛋白质、多肽、酶、激素、病原体以及 受体等
)
。
二、实验器材
微波炉 、
吹风机、
组化笔、
湿盒、烤箱、
振荡器、
染缸、光学显微镜、纯木浆卫生纸、计时器和通风橱等。
三、试剂配制
1.
0.01 M PBS(pH 7.34 )
:
9.0 g NaCl + 50 ml 0.2 M PB
加双蒸
水至
1000 ml
;
1000 ml 0.2M PB (pH 7.4)
=
5.93 g NaH 2 PO 4 ·
2H 2 O
+
58.02 g
Na 2 HPO 4 ·
12H 2 O in 1000 ml
双蒸水或=
190 ml A + 810 ml B
(
A. 0.2 M NaH 2 PO 4 ·
2H 2 O
:
15.6 g in 500 ml ddH 2 O
;
B. 0.2
M Na 2 HPO 4 ·
12H 2 O
:
71.632 g in 1000 ml dH 2 O
)。
2.
Citrate Buffered Saline
(
0.01 M
柠檬酸缓冲液,
PH6.0
):
28
ml A + 72 ml B + 200 ml ddH 2 O
(
e acid
(柠檬酸):
10.5 g
加双蒸水至
1000 ml
;
e sodium
(柠檬酸钠):
29.41 g
加
双蒸水至
1000 ml
)。
3.
细胞通透液:由终浓度分别为
0.3%
双氧水和
0.5%Triton
X-100
混合而成。配制方法是先用微波加热的
36 ml PBS
,再接着
加
120 ul TritonX-100,
并加热一儿,
冷却至临用前加
0.4 ml 30
%
H 2
O 2
。
4.
5
%羊血清或封闭血清,用
PBS
稀释。
5.
含
0.03
%
H 2 O 2
的
0.05
%
DAB
(避光)
:
用
20×
DAB
(
1
%,
10 mg/ml
)
5 ul
+
0.1 ul 30% H 2 O 2
+
95 ul PBS
。
6.
一抗、二抗均用
PBS
稀释。
7.
Xylene
、
梯度
Ethanol
(
100
%
×
2
、
95
%、
80
%、
70
%、
50
%)
、
双蒸水、中性树胶(封裱剂)。
8.
苏木精染液:
四、操作步骤
1
、脱蜡、水化
1)
60
℃
×20 min→Xylene 2 ×10 minutes
;
2)
100% absolute ethanol
:
2 ×
5 minutes
;
3)
95% ethanol 2 minutes
;
4)
80% ethanol 2 minutes
;
5)
70% ethanol 2 minutes
;
6)
distilled water:5 min
;
7)
PBS
洗
3
次
×
3 min
。
2
、细胞通透、封闭内源性过氧化物酶
8)
用封闭通透液浸润切片
30 min
(
RT
避光)。配法是用预热
40
ml PBS
加
120ul TritonX-100
加热几分钟后,临用前加
400 ul
30
%
H 2 O 2
。
9)
PBS
溶液洗
3
次
×
3 min
。
3
、抗原修复暴露抗原决定族
10)
切片放入
0.01 M
柠檬酸钠缓冲溶液(
pH6.0
)后,在微波炉
里高火
4 min
至沸腾后,
再加热约
6 min×
4
次,
每次间隔补足液体,
防止干片。
4
、封闭非特异性蛋白
11)
PBS
溶液洗
3
次
×
3 min
;
12)
将切片取出
,
周 围水分用滤纸吸干
,
用组化笔在组织周围画上圈
,
在圆圈内组织滴入
5%
羊血清(与二抗来源一致)后放入湿盒中
,
室
温
30
(
10
~
30
)
min
;
5
、一抗孵育
13)
甩去切片上的羊血清
,
用滤纸擦干组织周围残留血清,直接加入
已 稀释的一抗(
1
:
250
、
500
、
1000)后,放入湿盒中室温
1
小时,
然后
4
度过夜,从冰箱中取出需
37
℃复温
45 min
。
6
、二抗孵育
14)
将一抗倒掉并用
PBS
洗
5 min×
5
次;
15)
用滤纸将圆圈周围的水吸去,
加入已稀释的二抗后放入
37
℃
恒温烤箱中
30
min
(回收)。
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