妇科药-
抗
CD28
抗体协同刺激增强 抗
CD3
抗体
体外激活
T
淋巴细胞并降低
TGF-
β
的
表达
(1)
】
为了探讨体外激活
T
淋巴细胞的方法及活化后
T
淋巴细胞的免疫学特征,利
用抗
CD3
、抗
CD28
抗体在体外刺 激健康人外周血单个核细胞
PBMNC
,检测淋巴
细胞转化,
CD8 CD25
细胞比例和肿瘤生长因子
β
(
TGF-
β
)表达 等相关免疫
学指标。结果表明,在抗
CD28
抗体的协同作用下,抗
CD3< br>抗体的刺激活性明显
提高,
CD8 CD25
细胞比例明显增加,
TGF-
β
的表达下调。结论:
抗< br>CD28
抗
体协同刺激可以提供第二信号,使
T
淋巴细胞充分活化,< br>TGF-
β
表达水平明显
下降
【关键词】
抗
CD3
抗体
Anti-CD28 Antibody Costimulation Enhances Anti-CD3 antibod
Activating T Cells and Lowering TGF-
β
Expression in Vitro
Abstract In order to study how to activate T cells and their
immunological characteristics
,
the anti-CD3 and anti-CD28 McAbs were
used to stimulate PBMNC
,
then their related immunological changes
,
such as lymphocyte transformation function
,
the percentage of CD8
CD25 cells and
TGF-
β
expression were delected by lymplocyte transformation
assay
,
flow cytometry and RT- PCR respectively. The results showed
that in costimulation with anti-CD28 antibody stimulathetion
,
the
activity of anti-CD3 antibody was significantly enchanced
,
the ratio
of CD8 CD25 cells of T cells was obviously increared
,
while TGF-
β
expression was down-regulated. It was concluded that the anti-CD28
antibody costimulation could provide stimulatory signal Ⅱ,
which
make T cells more active
,
while the expression of TGF-
β
significantly down-regulated.
Key words anti-CD3 antibody; anti- CD28 antibody;TGF-
β
;T cell
T
淋巴细胞在人体免疫系统中扮演重的角色,其在体内处于抑制或耐受状态会导致免疫力下降,从而引起感染与肿瘤等发生。近年来人们一直探讨
体将外诱导活化的T
淋巴细胞用于过继免疫治疗。
T
细胞活化需
TCR/CD3
识 别
APC
表面的
MHC-
肽复合物提供的第一信号以及
CD28/B 7
、
LFA-1/ICAM-1
等协同
刺激分子相互作用提供的第二信号。目 前国内外多用抗
CD3
抗体体外激活
T
细
胞,将
CD8 CD25
杀伤性
T
淋巴细胞回输治疗免疫力下降引起的感染与肿瘤
[
1
,
2
]。但是研究表明,
T
淋巴细胞在接受第一信号之后,如果 不能接受第
二信号的刺激,则将迅速呈低反应性或失能。在抗
CD3
抗体体外激活T
淋巴细
胞的同时,提供第二信号对
T
淋巴细胞的活化以及后续的体内回 输治疗具有重
意义。
T
淋巴细胞表面的协同刺激分子
CD28
与其配 体
B7
的相互作用是为
T
淋
巴细胞活化提供第二信号的主途径之一, 近年来已有报道利用抗
CD28
抗体协同
抗
CD3
抗体体外扩增活化
T
淋巴细胞[
3
,
4
]。
抗
CD3
抗体刺激
T
淋巴细胞后, 会介导
T
淋巴细胞分泌
TGF-
β
。近年
来研究提示,TGF-
β
在介导体内长期免疫耐受的过程中起着关键性作用[
5
,6
]。作为一个有效的免疫抑制因子,
TGF-
β
可使肿瘤细胞逃避宿主 的免疫监
视,成为肿瘤的一道屏障,这可能是过继性免疫治疗肿瘤后易复发的一个重原
因[7-9
]。
本研究在抗
CD3
抗体体外模拟
T
淋巴细胞活化的第一信号的同时,利
用抗CD28
抗体模拟第二信号协同激活
T
淋巴细胞,增强了抗
CD3
抗体体外活化
T
淋巴细胞的功能;与此同时,研究发现在抗
CD28
抗体协 同刺激下
TGF-
β
的
表达水平出现明显地下降。
材料和方法
材料
人外周血取自体检合格的献血者。人淋巴细胞分离液(比重
1.077±0
.002< br>)购自
Amersham Bioxciences
公司。抗
CD3
单 克隆抗体、抗
CD28
单克隆抗体由军事医学科学院基础医学研究所分子免疫室提供。
FITC
标记
的抗
CD8
、
PE
标记的抗
CD25
抗体购自
Becton Dickinson
公司。
3H-TdR
购 自中
国原子能研究所。
RPMI 1640
培养液购自
Gibco
公司。
TGF-
β
ELISA
检测试剂
盒购自
Becton Dickinson
公司,
TrizoL
购自
Invitrigen
公司。
方法
PBMNC
分离
取正常人外周血,用肝素钠抗凝,生理盐水
2
倍稀释后小心加入等体积的< br>淋巴细胞分离液(
ρ
=1.077g/mL
),2 500×g
离心< br>20
分钟,取中间单个核细
胞层,生理盐水洗
2
遍,用含
10 % FCS
的
RPMI 1640
培养液制备成浓度为
1×106/ml
的单个核细胞悬液备用。
淋巴细胞转化试验
分离人外周血单个 核细胞(
PBMNC
),调整细胞密度为
1×109/L,加入
96
孔板,
100
μ
l/wall
。加入相应浓度的
CD3
抗体(
2
μ
g/ml
)、
CD28
抗体(
5
μ
g /ml
),设三个复孔,并设
PBS
阴性对照孔,于
5% CO2
、 37℃培养
56
小
时。加
3H-TdR
(
1 mCi/ml
)
0.5
μ
Ci/wall
,继续培养
16
小时 。收集细胞并
于液体闪烁仪上计数
cpm
值。计算刺激指数(
SI
)
=
(实验组
cpm
值
-
本底值)
/
(阴 性对照组
cpm
值
-
本底值)。
细胞亚群的
FACS
分析
收集
PBMNC
,用含
2% FCS
、
0.2 g/L
叠氮钠的
10 mmol/L PBS
洗
3
次;加
入 相应抗体,以
PBS
为阴性对照,冰浴振荡
30
分钟;
3 400×g
离心
30
秒,
收集细胞,将细胞洗
3
遍后用10 g/L
的多聚甲醛固定。用
FACS Calibur
流式
细胞仪检测分析。
RNA
的提取
收集
PBMNC
,
PBS
洗涤记数。按
1×106/ml
浓度细胞加入
Tr izoL
,剧烈震
荡裂解细胞。室温静置
5
分钟后,每
1ml TrizoL
加入
0.2 ml
氯仿,剧烈震荡
15
秒,室温静置
10
分钟。将
Eppendorf
管置于高速台式冷冻离心机,4℃,
13
400×g
离心
15
分钟。小心吸取上层液相置于另一无菌
Eppendorf
管中,加入
等体积异丙醇,室温沉淀
10
分钟。4℃,13 400×g离心
10
分钟,弃上清,沉
淀用
75
%乙醇洗涤
1遍,沉淀的
RNA
在室温自然干燥。用
30
μ
l
无< br>RNA
酶的
DEPC
水重悬干燥后的
RNA
。电泳分析以及分 光光度计定量,用于下一步实验或
-
70℃长期保存。
cDNA
逆转录
取约含
1
μ
g
稀释的
RNA
溶液,加入
Oligo(dT) 1 < br>μ
l
,70℃孵育
5
分
钟,迅速放入冰中冷却,依次按说明书 加入
2.5 mmol/L dNTP
、5×反转录缓冲
液、
AMV
反转录酶、
RNA
酶抑制剂,
DEPC
水。将上述反应物混匀后,42℃反应
60
分钟,95℃ 5
分钟灭活反转录酶,获得的
cDNA
置
-
20℃保存备用。
TGF-
β
表达水平的半定量
PCR
测定
利用
Biosun
核酸分析软件,分析
TGF-
β
基因的全序列,获得特异性的区
间,设计特异性的引物。取等量的各组
cDNA
为模 板,以
GAPDH
做为内参照,用
半定量的方法测定
TGF-
β的表达水平。
PCR
条件如下:94℃预变性
5
分钟后;
开始下 列循环:94℃变性
30
秒,55℃退火
30
秒,72℃延伸
30< br>秒,扩增
30
个
循环;最后
72℃延伸
7
分钟。2%
琼脂凝胶电泳分析,利用
Labworks
软件对
PCR
结 果条带进行灰度分析,以内参照
GAPDH
为对照,计算不同抗体条件刺激下的
TGF -
β
的表达情况。
作 者:骆群,吕明,于鸣,黎燕【摘】为了探讨体外激活
T
淋巴细胞的方法及
活化后T
淋巴细胞的免疫学特征,利用抗
CD3
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细胞培养上清中
TGF-
β
水平的
ELISA
分析
按说明书的操作步骤,将
TGF-
β
抗体溶解于包被液 (碳酸盐缓冲液
pH
9.6
),浓度为
4
μ
g/ml
,
100
μ
l/wall
包被
ELISA 96
孔板,4℃过夜后,用
10 g/L
的
BSA 37℃封闭
2
小时,用
PBST
(
PBS 0.1%
吐温< br>20
)洗涤
3
遍;按
100
μ
l/wall
加入各条件刺激下的
PBMNC
细胞培养上清,37℃孵育
1
小时,用
PBST
洗涤
3
遍;按
100
μ
l/wall
加 入
biotin-
抗
TGF-
β
抗体,37℃孵育
1
小
时,
PBST
洗涤
3
遍;
avidin-
辣根 过氧化酶
(a-HRP)50
μ
l/wall
,室温放置
45
分钟,
PBST
洗涤
5
遍。
OPD
显色,于
49 2 nm
处测吸收值;以标准的
TGF-
β
做
标准曲线,计算各培养 上清中
TGF-
β
含量。
统计学处理
应用
SPSS
软件分析结果,数 据用均数±标准差(x±SD)表示,组间比较
采用配对
t
检验,
P<0.0 5
为有统计学差异。
结果
抗
CD28
抗体 协同抗
CD3
抗体激活
T
淋巴细胞
3H-TdR
掺入实验结果显示,抗
CD3
抗体在体外可以激活
T
淋巴细胞,其刺
激指数为
16.1
。单独的抗
CD28
抗体 没有明显的刺激活性;但是在抗
CD28
抗体
的协同作用下,抗
CD3
抗体的刺激活性明显提高,其刺激指数达到
25.9
(表
1
)。
T able 1. Enhancing effect of anti-CD3/28 on lymphocyte
transformation activity (SI) (
略
)
抗
CD28
抗体协同抗
CD3
抗体增强淋巴细胞转化活性
在实验浓度的抗体刺激后,收集细胞,分析激活后的细胞中
CD8 CD25
细
胞亚群的变化。结果显示,抗
CD3
抗体刺激后的细胞中
CD8 CD25
细胞由
PBS
对照组的
3.98±0.23%增加到
12 .3±2.36%;而单纯的抗
CD28
抗体却没有明显
的淋巴细胞转化功能(4.0 3±0.95%);但是,在抗
CD28
抗体协同刺激作用
下,抗
CD3抗体的淋巴细胞转化功能显著提高,协同刺激后
CD8 CD25
细胞所
妇科药-
妇科药-
妇科药-
妇科药-
妇科药-
妇科药-
妇科药-
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